X
XLinkedinWhatsAppTelegramTelegram
0
Читайте эту статью в:

Использование B-режима ультрасонографии для исследования половых путей хряков

Этот инструмент позволяет прогнозировать потенциальный размер выработки семенной жидкости и точно диагностировать недостаточность репродуктивной функции / бесплодие, что имеет связь с пораженными тканями.

B-режим ультрасонографии – широко используемый режим диагностики репродуктивного здоровья особей мужского пола, особенно мужчин. Было доказано, что можно визуализировать семенники, придатки семенников и дополнительные половые железы при определении причин недостаточности репродуктивной функции / бесплодия и при диагностике заболеваний половых путей особей мужского пола. В ветеринарной медицине ультрасонография используется в отношении жеребцов, быков, самцов кроликов, как и собак, но также, хотя и реже, хряков, что будет кратко описано в этой статье.

B-режим ультрасонографии репродуктивного тракта следует выполнять, когда хряк находится в вертикальном положении и в идеале также лишен подвижности. Этого можно достичь, если поместить хряка в специальную клетку или производить сканирование, когда хряк находится на манекене свиноматки для сбора спермы. Другой подход для иммобилизации заключается в том, чтобы поднять кабана с помощью особых, специально разработанных креплений, но это может иметь ограничения, вызванные небольшим анатомическим смещением семенников и их придатков. В некоторых случаях также можно сканировать кабанов в спокойном состоянии после сбора семенной жидкости в комнате для сбора спермы или в то время, когда они находятся в своих загонах.

Существует множество ультразвуковых аппаратов, которые можно использовать для сканирования репродуктивного тракта хряков. Несмотря на то, что в данном документе нет намерения, чтобы отдать предпочтение тому или иному аппарату, авторы приобрели опыт работы с диагностической техникой при использовании устройств, которые с большим успехом обеспечивают высокое разрешение, а именно: HONDA 1600, Fazone CB и Zonare Z-one.

Сканирование дополнительных половых желез должно выполняться трансректально с использованием ультразвукового зонда для линейного сканирования (Кларк и Альтхаус, 2002; рис.1), в то время как для семенника, придатка семенника, а также семенного канатика предпочтительным устройством будет секторный (микро-) выпуклый ветеринарный зонд (рис.2А и В). Использовались частоты от 5,0 до 9,0 МГц, причем более низкие частоты были более подходящими для тканей, которым требовалась более высокая глубина проникновения (т.е. для семенника и тела придатка семенника), а более высокие частоты для достаточно миниатюрных структур, таких как головка придатка семенника и хвост придатка семенника. Таким образом, оптимальный зонд и частота зависят от цели обследования.

 

Рис. 1: Размещение держателя с передатчиком в прямой кишке для визуализации дополнительных половых желез хряка (Взято у Кларка и Альтхауса, 2002).Placement of transducer holder with the transducer per rectum for visualization of accessory sex glands of the boar (from Clark & Althouse, 2002).

Рис. 1: Размещение держателя с передатчиком в прямой кишке для визуализации дополнительных половых желез хряка (Взято у Кларка и Альтхауса, 2002).Placement of transducer holder with the transducer per rectum for visualization of accessory sex glands of the boar (from Clark & Althouse, 2002).

 

Перед сканированием семенников, придатков семенников и семенного канатика поверхность мошонки должна быть чистой и, при необходимости, выбрита.

Семенники могут сканироваться либо продольно, либо поперечно (рис. 2А и В). Чтобы определить окружность яичка, необходимо использовать поперечную визуализацию. Здоровая ткань семенников имеет среднюю способность отражения звукового сигнала и имеет гомогенную эхоструктуру, с гиперэхогенной сетью каналов яичка в центре яичка (рис. 3А и В).

Рис. 2: Процедура сканирования яичка у спокойного хряка в свободном состоянии после сбора семенной жидкости в комнате для сбора спермы. A) Продольное сканирование с использованием микровыпуклого зонда. B) Поперечное сканирование с использованием выпуклого зонда. Эта локация сканирования должна также использоваться при визуализации тела придатка яичка.Procedure of scanning of the testis in a non-restrained calm boar post-ejaculation in the semen collection room. A) Longitudinal scanning using a micro-convex probe. B) Transversal scanning using a convex probe. This scanning location has also to be employed when imaging the epididymal corpus.

Рис. 2: Процедура сканирования яичка у спокойного хряка в свободном состоянии после сбора семенной жидкости в комнате для сбора спермы. A) Продольное сканирование с использованием микровыпуклого зонда. B) Поперечное сканирование с использованием выпуклого зонда. Эта локация сканирования должна также использоваться при визуализации тела придатка яичка.Procedure of scanning of the testis in a non-restrained calm boar post-ejaculation in the semen collection room. A) Longitudinal scanning using a micro-convex probe. B) Transversal scanning using a convex probe. This scanning location has also to be employed when imaging the epididymal corpus.

Рис. 3: Ультрасонографические изображения яичка кабана, отсканированного поперечно (A) и продольно (B). Сеть каналов яичка отображается как гиперэхогенное пятно в центре яичка (сплошная стрелка). Паренхима яичка обладает средней эхогенной и однородной эхоструктурой. Поперечная визуализация также обеспечивает оптимальную визуализацию тела придатка яичка (пунктирная стрелка), которое обычно имеет аналогичный ультразвуковой вид, как и само яичко.

Рис. 3: Ультрасонографические изображения яичка кабана, отсканированного поперечно (A) и продольно (B). Сеть каналов яичка отображается как гиперэхогенное пятно в центре яичка (сплошная стрелка). Паренхима яичка обладает средней эхогенной и однородной эхоструктурой. Поперечная визуализация также обеспечивает оптимальную визуализацию тела придатка яичка (пунктирная стрелка), которое обычно имеет аналогичный ультразвуковой вид, как и само яичко.

Сканирование эпидидимиса должно выполняться в разных положениях в зависимости от того, находится ли головка (от вентральной стороны), тело (в поперечном направлении в середине горизонтальной оси семенника при ручной фиксации яичка) или хвост (от дорсальной стороны во время ручного подталкивания яичка и эпидидимиса снаружи) (рис. 4, Кауффолд и др., 2011).

Рис. 4: Схематическая иллюстрация топографии яичка и его придатков у хряков с рекомендуемым размещением передатчика при обследовании головки придатка яичка (a), тела придатка яичка (b) и хвоста придатка яичка (c). Получать изображение головки и хвоста лучше всего в продольном направлении, а тела – в поперечном направлении (Взято у Кауффолда и др., 2011). Schematic illustration of the topography of the testis and epididymis in boars, with suggested transducer placement when assessing the epididymal caput (= head; a), corpus (b) and cauda (= tail; c). The caput and cauda are best imaged longitudinally and the corpus transversally (from Kauffold et al., 2011).
Рис. 4: Схематическая иллюстрация топографии яичка и его придатков у хряков с рекомендуемым размещением передатчика при обследовании головки придатка яичка (a), тела придатка яичка (b) и хвоста придатка яичка (c). Получать изображение головки и хвоста лучше всего в продольном направлении, а тела – в поперечном направлении (Взято у Кауффолда и др., 2011). Schematic illustration of the topography of the testis and epididymis in boars, with suggested transducer placement when assessing the epididymal caput (= head; a), corpus (b) and cauda (= tail; c). The caput and cauda are best imaged longitudinally and the corpus transversally (from Kauffold et al., 2011).

Как правило, эпидидимальная ткань обладает однородной и правильной эхоструктурой, при этом головка и тело эпидидимиса обладают более тонкой, а хвост – в большей степени мраморной эхоструктурой (рис. 5A–C). Однако, эхогенность, которая определяется при «исследовании с использованием серой шкалы» и дается как среднее значение серого, незначительно отличается между тремя сегментами, наряду с изменениями при сравнении изображений, полученных до и после сбора спермы (Кауффолд и др., 2011) у хряка.

Рис. 5: Ультрасонографические изображения эпидидимальных сегментов: головки придатка яичка (a), тела придатка яичка (b) и хвоста придатка яичка (c). Рамки, обозначенные «+» и «x», проецируются в соответствующие эпидидимальные сегменты. Яичко (T). Рядом с головкой придатка яичка расположены многочисленные трубчатые структуры, идентифицированные как части семенного канатика (F). Стрелки указывают на серозное покрытие семенников (т.е. семенниковую сумку) (Взято у Грахофера, 2011).

Рис. 5: Ультрасонографические изображения эпидидимальных сегментов: головки придатка яичка (a), тела придатка яичка (b) и хвоста придатка яичка (c). Рамки, обозначенные «+» и «x», проецируются в соответствующие эпидидимальные сегменты. Яичко (T). Рядом с головкой придатка яичка расположены многочисленные трубчатые структуры, идентифицированные как части семенного канатика (F). Стрелки указывают на серозное покрытие семенников (т.е. семенниковую сумку) (Взято у Грахофера, 2011).

Здоровые дополнительные половые железы (например, бульбоуретральная, предстательная и везикулярная железы) были лучше всего описаны Кларком и Альтхаусом (2002) следующим образом: «Парные бульбоуретральные железы лучше всего определяются как длинная овальная железа с однообразным эхогенным свойством с большим безэховым пространством в центре железы, занимающим большую часть ее длины. Стенки везикулярных желез оказались тонкими, с паренхимой, имеющей многочисленные небольшие эхояркие области, которые, как оказалось, сливаются и образуют центральный канал. Предстательную железу лучше всего идентифицировать как железу размером с грецкий орех с однородным эхогенным оформлением». Как было показано для эпидидимиса, состояние всех трех желез изменилось по сравнению с предшествующей эякуляцией настолько, насколько уменьшился «жидкий компонент», а у желез затем появилась более высокая эхогенность.

Исследования по практическому использованию ультрасонографии в сфере репродуктивной функции хряков являются редкими. Диаметр семенников был определен для того, чтобы этот показатель соотнести с общим числом сперматозоидов в эякуляте (Кларк и др., 2003) или оценить половое развитие (Форд и Уайз, 2010). Хотя корреляция парного диаметра семенников и общего количества сперматозоидов была неудовлетворительной, по крайней мере, у хряков, которые были старше 8 месяцев, то определение размера семенников у молодых хряков в возрасте примерно 4-х месяцев оказалось пригодным для прогнозирования тестикулярного объема и, следовательно, ежедневного производства спермы в более старшем возрасте, когда хряк становится половозрелым. Существует недавний отчет относительно бесплодного хряка большой белой породы с мультикистозной дегенерацией бульбоуретральной железы; пораженная железа была отображена с цельными и четко выраженными анэхогенными кистами разного размера (рис.6; Грахофер и др., 2016).

Рис. 6: Изображения бульбоуретральной железы больного хряка, имеющего несколько четко выраженных анахогенных кист разного размера (A), и здорового хряка для сравнения (B) (Грахофер и др., 2016).

Рис. 6: Изображения бульбоуретральной железы больного хряка, имеющего несколько четко выраженных анахогенных кист разного размера (A), и здорового хряка для сравнения (B) (Грахофер и др., 2016).

Подводя итог, можно сказать, что ультразвуковое исследование репродуктивного тракта хряка является жизнеспособной диагностической методикой, которая может предоставить ценную информацию о функционировании тканей и их здоровье. Не смотря на то, что практическое использование в настоящее время ограничено, автор надеется, что использование этого режима (в дополнение к другим, таким как режим цветового доплера [рис. 7A и B]) получит дальнейшее распространение у занятых в свиноводстве в качестве инструмента, который позволяет прогнозировать потенциальный размер выработки семенной жидкости и точно диагностировать недостаточность репродуктивной функции / бесплодие, что имеет связь с пораженными тканями.

Рис. 7: Изображения яичка, полученные с использованием ультрасонографии в режиме цветового доплера. A) Сосуды семенного канала. B) Яичковая артерия.

Рис. 7: Изображения яичка, полученные с использованием ультрасонографии в режиме цветового доплера. A) Сосуды семенного канала. B) Яичковая артерия.

Выражение признательности

Авторы благодарят Надю Леглер за ее помощь с созданными изображениями, использованными в этой статье.

Комментарии к статье

Эта область не предназначена для консультаций авторов по поводу своих статей, это место для открытых дискуссий между пользователями pig333.ru
Оставьте новый Комментарий

Ограниченный доступ пользователям 333. Чтобы отправить комментарий, Вам необходимо авторизироваться

Вы не подписаны на этот список pig333.ru за 3 минуты

Каждые две недели обновляется рассылка новостей на всех сайтах pig333.ru

Введите логин и зарегистрируйтесь на список

сопутствующие статьи

Вы не подписаны на этот список pig333.ru за 3 минуты

Каждые две недели обновляется рассылка новостей на всех сайтах pig333.ru

Введите логин и зарегистрируйтесь на список